实验介绍
一、实验简介

临床样本 DNA/RNA 提取是指从人体来源的临床样本(如血液、组织、体液、细胞)中,通过物理裂解、化学分离或酶解等方法,去除蛋白质、脂质、多糖等杂质,纯化获得高纯度、高完整性核酸(DNA 或 RNA)的核心技术。其核心原理基于 “核酸与杂质的理化性质差异”—— 利用核酸在特定溶液(如裂解液、离心柱结合液)中的溶解性、吸附性差异,通过裂解(破坏细胞 / 组织结构释放核酸)、纯化(去除杂质)、洗脱(获得纯净核酸)三步关键流程,实现核酸分离。
DNA 提取:针对样本中的基因组 DNA(gDNA)、线粒体 DNA(mtDNA)或病毒 DNA,通过蛋白酶 K 消化蛋白质、酚 - 氯仿抽提或离心柱吸附(如硅胶膜特异性结合 DNA),去除 RNA 污染(添加 RNase),最终获得可用于 PCR、基因测序、基因分型的纯净 DNA;
RNA 提取:针对样本中的总 RNA(含 mRNA、rRNA、tRNA)或特定 RNA(如 mRNA、microRNA),通过胍盐(如异硫氰酸胍)抑制 RNA 酶活性(防止 RNA 降解)、酚 - 氯仿分层分离 RNA(RNA 溶于水相)或离心柱纯化,去除 DNA 污染(添加 DNase),最终获得可用于 RT-PCR、RNA 测序、Northern blot 的完整 RNA。
该技术是临床分子诊断(如新冠病毒核酸检测、肿瘤基因检测)、药物研发(如伴随诊断靶点筛选)、基础医学研究(如基因表达分析)的 “上游核心环节”,核酸的纯度与完整性直接决定下游实验(如测序、PCR)的成败,需严格遵循标准化操作与质量控制流程。
二、核心应用场景

(一)临床分子诊断与疾病筛查
感染性疾病核酸检测:
病毒检测:从鼻咽拭子、血液、脑脊液中提取病毒 RNA/DNA(如新冠病毒 RNA、乙肝病毒 DNA、HPV 病毒 DNA),用于病毒定性(是否感染)与定量(病毒载量)检测,指导抗病毒治疗(如乙肝病毒 DNA 载量>10⁶ copies/mL 需启动抗病毒治疗);
细菌 / 真菌检测:从脓液、痰液、组织中提取病原菌 DNA(如结核分枝杆菌 DNA、念珠菌 DNA),通过 PCR 或测序明确病原菌种类,解决传统培养法 “耗时长、阳性率低” 的问题(如结核分枝杆菌培养需 4-6 周,DNA 提取后 PCR 检测 1-2 天出结果)。
肿瘤分子分型与靶向治疗:
肿瘤驱动基因突变检测:从肿瘤组织(手术 / 穿刺组织)、血液(循环肿瘤 DNA ctDNA)中提取 DNA,检测基因突变(如肺癌 EGFR 突变、乳腺癌 HER2 基因突变、结直肠癌 KRAS 突变),明确肿瘤分子分型,筛选适合靶向治疗的患者(如 EGFR 突变患者使用 EGFR 抑制剂);
肿瘤融合基因检测:从肿瘤组织中提取 RNA,通过 RT-PCR 或 RNA 测序检测融合基因(如非小细胞肺癌 ALK 融合、白血病 BCR-ABL 融合),为靶向药物选择提供依据(如 ALK 融合患者使用 ALK 抑制剂)。
遗传病与产前诊断:
遗传病基因检测:从外周血中提取 DNA,检测遗传病相关基因突变(如地中海贫血 α/β 珠蛋白基因突变、囊性纤维化 CFTR 基因突变),用于遗传病筛查(如新生儿筛查)与确诊;
产前诊断(NIPT):从孕妇外周血中提取胎儿游离 DNA(cffDNA),检测胎儿染色体异常(如 21 三体综合征、18 三体综合征),实现无创、安全的产前筛查(避免羊水穿刺的流产风险)。
(二)药物研发与伴随诊断
药物靶点验证:从临床样本(如患者肿瘤组织、血液)中提取 DNA/RNA,分析靶点基因的突变(如 PD-1 基因多态性)、表达水平(如 PD-L1 mRNA 表达),验证靶点与疾病的关联性,为药物研发提供临床依据;
伴随诊断试剂开发:为伴随诊断试剂盒(如肿瘤靶向药伴随诊断)提供标准核酸样本(如已知 EGFR 突变的 DNA 样本、ALK 融合的 RNA 样本),用于试剂盒的灵敏度、特异性验证;
药物疗效监测:治疗前后从患者样本中提取核酸,检测靶点基因变化(如靶向治疗后 EGFR 突变丰度下降、病毒治疗后 HBV DNA 载量降低),量化药物疗效,指导剂量调整。
(三)基础医学研究
基因表达分析:从正常与疾病样本(如正常肝组织 vs 肝癌组织)中提取 RNA,通过 RT-qPCR、RNA 测序分析差异基因表达(如癌基因 MYC mRNA 上调、抑癌基因 p53 mRNA 下调),揭示疾病发生机制;
表观遗传学研究:从样本中提取 DNA,用于 DNA 甲基化(如 CpG 岛甲基化)、组蛋白修饰检测,分析表观遗传调控对疾病的影响(如肿瘤抑制基因甲基化导致表达沉默);
微生物组研究:从粪便、口腔拭子等样本中提取微生物 DNA,通过 16S rRNA 基因测序或宏基因组测序,分析肠道 / 口腔微生物群落结构,研究微生物与疾病(如肠炎、肥胖)的关联。
三、实验流程与周期

(一)DNA 提取通用流程(以离心柱法为例)
样本预处理(0.5-1 天):
组织样本:新鲜 / 冰冻组织(如肿瘤穿刺组织)用液氮研磨或组织匀浆机破碎,加入裂解液(含蛋白酶 K),56℃孵育 1-3 h(根据组织硬度调整,如肝组织 1 h、骨组织 3 h),彻底消化蛋白质与组织碎片;
血液样本:全血样本加入红细胞裂解液,室温孵育 10 min 后离心(3000 rpm,5 min),去除红细胞,保留白细胞沉淀;血浆 / 血清样本(提取 ctDNA)需先通过离心富集游离 DNA(如 12000 rpm,10 min);
体液样本:脑脊液、尿液等体液样本需先离心(5000 rpm,10 min)去除细胞碎片,若样本量少(<1 mL),需用核酸富集柱浓缩。
核酸纯化(0.5 天):
裂解与结合:向预处理后的样本中加入结合液(如高盐缓冲液),调节 pH 值,使 DNA 特异性结合到离心柱的硅胶膜上;
洗涤去杂质:依次加入洗涤液 1(去除蛋白质)、洗涤液 2(去除盐类、残留杂质),每次洗涤后离心(12000 rpm,1 min),弃去废液;
洗脱 DNA:向离心柱中加入无 RNase 的洗脱缓冲液(如 TE 缓冲液、无酶水),室温静置 2 min 后离心(12000 rpm,2 min),收集洗脱液,获得纯净 DNA。
质量检测(0.5 天):
纯度检测:通过紫外分光光度计(Nanodrop)检测 DNA 的 A260/A280 比值(1.8-2.0 为纯度合格,<1.8 提示蛋白质污染,>2.0 提示 RNA 污染);
完整性检测:通过琼脂糖凝胶电泳(1% 凝胶)检测 DNA 片段大小(基因组 DNA 应呈现清晰的高分子量条带,无明显拖尾,提示完整性好);
浓度检测:通过 Nanodrop 或 Qubit 荧光定量仪检测 DNA 浓度(临床诊断需浓度≥20 ng/μL,满足下游 PCR 需求)。
(二)RNA 提取通用流程(以胍盐 - 离心柱法为例)
样本预处理与裂解(0.5-1 天):
细胞 / 组织样本:新鲜样本立即加入含 RNA 酶抑制剂(如 RNasin)的裂解液(如 TRIzol 试剂),组织需匀浆破碎,室温孵育 5 min,使 RNA 酶失活并释放 RNA;
体液样本:唾液、脑脊液等样本需加入裂解液后离心(12000 rpm,10 min),去除细胞碎片,若 RNA 含量低,需用 RNA 富集柱浓缩;
避免 RNA 降解:全程使用无 RNA 酶耗材(如无酶离心管、枪头),操作环境需用 RNA 酶清除剂处理,防止外源性 RNA 酶污染。
核酸纯化(0.5 天):
分层分离:向裂解液中加入氯仿,剧烈振荡后离心(12000 rpm,15 min,4℃),样本分层为有机相(蛋白质、脂质)、中间相(DNA)、水相(RNA),吸取水相(避免接触中间相);
结合与洗涤:向水相中加入异丙醇沉淀 RNA,离心(12000 rpm,10 min,4℃)获得 RNA 沉淀;用 75% 乙醇洗涤沉淀(去除盐类),离心后弃去乙醇,晾干沉淀;
洗脱 RNA:加入无 RNA 酶的洗脱液(如无酶水)溶解 RNA,获得纯净 RNA。
质量检测(0.5 天):
纯度检测:Nanodrop 检测 A260/A280 比值(1.9-2.1 为纯度合格,<1.9 提示蛋白质污染)、A260/A230 比值(>2.0 为合格,<2.0 提示盐类污染);
完整性检测:通过琼脂糖凝胶电泳(1% 变性凝胶)或 Agilent 2100 生物分析仪检测 RNA 完整性(总 RNA 应清晰显示 28S、18S rRNA 条带,28S/18S 亮度比≈2:1,RIN 值>7.0 为完整性好);
浓度检测:Qubit 荧光定量仪检测 RNA 浓度(RNA 测序需浓度≥50 ng/μL,RIN 值>8.0)。
(三)实验周期
标准样本(单类型样本,≤20 个):
DNA 提取(如血液、常规组织):2-3 个工作日(预处理 0.5-1 天,纯化 0.5 天,质量检测 0.5 天);
RNA 提取(如新鲜组织、细胞):2-3 个工作日(需额外注意 RNA 酶抑制,操作时间与 DNA 提取相近);
复杂样本(特殊类型或大样本量):
特殊样本(如骨组织、FFPE 组织、低丰度 ctDNA):额外增加 1-2 天(骨组织需脱钙处理,FFPE 组织需脱蜡与核酸修复,ctDNA 需富集);
大样本量(≥96 个样本):4-5 个工作日(需批量处理,分批次纯化与检测);
临床诊断级提取(需符合 CLIA/ISO 15189 规范):额外增加 1 天(需双人核对、质量记录存档、结果报告审核)。
四、客户需提供的样本信息

(一)核心样本与提取需求
样本类型与基础信息:
样本类型:明确样本来源(如外周血、肿瘤组织、鼻咽拭子、脑脊液、粪便、FFPE 组织);不同样本处理方式差异大(如血液需区分全血 / 血浆 / 血清,组织需区分新鲜 / 冰冻 / FFPE);
样本状态:说明样本保存条件(如新鲜样本 4℃保存<24 h,冰冻样本 - 80℃保存,FFPE 组织室温保存)、保存时长(如冰冻组织保存<6 个月,避免反复冻融)、是否存在特殊情况(如血液溶血、组织自溶、FFPE 组织脱蜡不彻底);
样本量:提供样本量(如全血 2 mL、肿瘤组织 50 mg、鼻咽拭子 1 支),需满足最低提取需求(如 DNA 提取需全血≥0.5 mL,RNA 提取需新鲜组织≥20 mg);若样本量不足,需提前告知,以便调整提取方案(如使用微量提取试剂盒)。
提取目标与下游应用:
核酸类型:明确提取 DNA 或 RNA;若为 DNA,需说明是否提取基因组 DNA(gDNA)、循环肿瘤 DNA(ctDNA)或病毒 DNA;若为 RNA,需说明是否提取总 RNA、mRNA 或 microRNA;
下游实验需求:告知下游应用场景(如 PCR 检测、基因测序、RT-qPCR、Northern blot),不同应用对核酸质量要求不同(如 PCR 需 DNA 纯度 A260/A280≈1.8,RNA 测序需 RNA RIN 值>8.0);
特殊要求:如提取 ctDNA 需去除白细胞污染(避免基因组 DNA 干扰)、提取 mRNA 需用 Oligo (dT) 磁珠富集、提取 FFPE 组织 RNA 需进行核酸修复(去除甲醛交联)。
质量控制与交付要求:
质量标准:明确核酸纯度(如 DNA A260/A280 1.8-2.0)、完整性(如 RNA RIN 值>7.0)、浓度(如 DNA 浓度≥20 ng/μL,RNA 浓度≥10 ng/μL)要求;
交付形式:指定核酸洗脱液类型(如无酶水、TE 缓冲液)、保存容器(如无酶离心管、冻存管)、交付数量(如提取后分 2 管保存,每管 50 μL);
临床合规要求:若为临床诊断用样本,需说明是否需符合 CLIA、ISO 15189 或中国《临床基因扩增检验实验室管理办法》,是否需提供溯源记录与质量报告。
(二)信息要求细则
样本预处理说明:
已预处理样本:若客户已进行部分处理(如血液分离血浆、组织匀浆),需提供预处理方法(如血浆分离离心条件:3000 rpm,10 min),避免重复处理或处理不当;
特殊预处理需求:如骨组织需提前脱钙(使用 EDTA 脱钙液)、FFPE 组织需脱蜡(使用二甲苯脱蜡),需告知是否已完成,未完成则由实验方处理(额外增加时间)。
污染控制要求:
避免交叉污染:若样本为传染病样本(如新冠病毒阳性样本、HIV 阳性样本),需提前告知,实验方将在生物安全柜中操作,使用专用耗材,避免污染其他样本;
内源性污染去除:如提取 RNA 需去除 DNA 污染(添加 DNase 处理)、提取 DNA 需去除 RNA 污染(添加 RNase 处理),需明确告知是否需要额外去污染步骤。
紧急需求说明:
若为急诊样本(如临床抢救需快速提取核酸),需说明紧急程度(如 24 小时内完成提取与检测),实验方将优先处理,缩短周期(如 1 个工作日完成标准样本提取)。
五、交付内容及增值服务

(一)基础交付
纯化后的核酸样本:
核酸制品:按客户要求分装(如每管 50-100 μL),用无酶冻存管保存,标注样本编号、核酸类型(DNA/RNA)、浓度、纯度、提取日期;
保存与运输:短期保存(<1 周)4℃运输,长期保存(>1 周)-80℃冷冻运输,运输时使用干冰或冰袋,避免核酸降解;RNA 样本需额外加入 RNA 酶抑制剂,确保运输过程中不降解。
完整提取报告:
样本信息:样本编号、类型(如外周血、肿瘤组织)、原始样本量、保存条件、预处理步骤(如组织匀浆、血液离心);
提取方法:使用的试剂盒品牌与批号(如 Qiagen DNeasy Blood & Tissue Kit)、提取流程(如离心柱法、磁珠法)、关键步骤参数(如裂解温度 56℃、孵育时间 2 h);
质量检测结果:
纯度数据:DNA A260/A280、A260/A230 比值,RNA A260/A280、A260/A230 比值及 RIN 值(若检测);
浓度数据:Nanodrop 或 Qubit 检测的核酸浓度(如 DNA 浓度 35 ng/μL,总产量 700 ng);
完整性验证:琼脂糖凝胶电泳图(标注 DNA 条带大小、RNA 28S/18S 条带);
结论:核酸质量是否符合下游实验要求(如 “DNA 纯度 A260/A280=1.92,浓度 35 ng/μL,符合 PCR 检测需求”)。
原始记录与质控文件:
操作记录:提取过程原始数据(如离心时间、温度,孵育时长)、试剂使用记录(试剂盒批号、有效期);
质控报告:仪器校准记录(Nanodrop、离心机校准证书)、阴性对照结果(如空白提取无核酸,排除交叉污染);
溯源文件:若为临床样本,提供样本接收与处理溯源表(双人核对签名),符合临床合规要求。
(二)增值服务
核酸质量优化与定制处理:
低质量核酸修复:针对降解核酸(如 FFPE 组织 RNA、长期保存的 DNA),使用核酸修复试剂盒(如去除 DNA 断裂末端、修复 RNA 交联),提升完整性(如 RNA RIN 值从 6.0 提升至 7.5);
微量核酸富集:针对低丰度样本(如 ctDNA、单细胞 RNA),使用磁珠富集或滚环扩增(RCA)技术,提高核酸浓度(如 ctDNA 浓度从 5 ng/μL 提升至 20 ng/μL),满足下游测序需求;
去污染处理:针对高杂质样本(如粪便 DNA 含多糖、血液 RNA 含血红蛋白),通过额外纯化步骤(如蛋白酶 K 二次消化、多糖去除柱),降低杂质含量(如 DNA A260/A280 从 1.5 提升至 1.8)。
下游实验衔接与技术支持:
核酸预处理:根据下游实验需求,提供核酸预处理服务(如 DNA 酶切、RNA 逆转录为 cDNA、mRNA 反转录为文库),直接交付可用于实验的模板(如 PCR 模板 cDNA);
实验方案设计:结合提取的核酸质量,为下游实验(如 PCR、测序)设计方案(如根据 DNA 浓度调整 PCR 引物浓度,根据 RNA 完整性选择测序平台);
技术培训:提供核酸提取操作培训(样本处理、试剂使用、污染控制)、质量检测仪器(Nanodrop、Qubit)操作培训,适合临床实验室或科研团队。
临床与科研支持:
临床诊断报告辅助:为临床样本提取结果提供解读(如 “RNA RIN 值 = 6.5,适合 RT-PCR 检测,不建议用于全长 RNA 测序”),协助临床医生判断下游检测可行性;
科研数据整合:为批量科研样本(如 100 例肿瘤组织)提供核酸质量统计分析(如纯度分布、浓度均值),结合样本临床信息(如肿瘤分期),生成质量分析报告;
合规支持:为临床诊断用提取服务提供合规文件(如方法学验证报告、室内质控记录),协助实验室通过 CLIA、ISO 15189 认证。
六、技术优势

(一)高纯度与完整性,保障下游实验可靠性
通过标准化裂解、纯化流程(如离心柱法特异性结合核酸、蛋白酶 K 彻底消化蛋白质、RNA 酶 / DNA 酶定向去污染),可获得高纯度核酸(DNA A260/A280 1.8-2.0,RNA A260/A280 1.9-2.1),无蛋白质、盐类、有机溶剂残留;针对易降解样本(如 RNA、FFPE 组织核酸),通过 RNA 酶抑制剂、核酸修复技术,可保持核酸完整性(RNA RIN 值>7.0,DNA 无明显拖尾),避免因核酸质量差导致下游 PCR 失败、测序数据低质。
(二)适配多样化临床样本,应用范围广
可处理几乎所有临床样本类型:① 血液类(全血、血浆、血清、脐带血);② 组织类(新鲜组织、冰冻组织、FFPE 组织、骨组织、穿刺组织);③ 体液类(脑脊液、尿液、唾液、胸腹水);④ 分泌物 / 排泄物类(鼻咽拭子、粪便、痰液);针对不同样本特性定制提取方案(如 FFPE 组织脱蜡修复、骨组织脱钙、ctDNA 富集),解决特殊样本提取难题(如 FFPE 组织 RNA 降解严重、粪便样本杂质多)。
(三)标准化与自动化,结果可重复且效率高
采用商品化试剂盒(如 Qiagen、Thermo Fisher 试剂盒)与标准化操作流程(SOP),减少人为操作误差;支持自动化提取(如使用 KingFisher、MagNA Pure 自动化核酸提取仪),实现 96 孔板高通量处理,日均可提取数百个样本,且批内、批间重复性好(核酸浓度 CV<10%,纯度 CV<5%);临床级提取严格遵循 CLIA/ISO 15189 规范,全程溯源,满足临床诊断的合规要求。
(四)兼顾灵敏度与特异性,满足低丰度核酸需求
针对低丰度核酸样本(如血浆 ctDNA、脑脊液病毒 RNA、单细胞核酸),通过磁珠富集、滚环扩增等技术,可从微量样本(如 100 μL 血浆、1 个细胞)中提取到足量核酸(浓度≥10 ng/μL);同时通过特异性结合(如硅胶膜只结合 DNA、Oligo (dT) 磁珠只结合 mRNA),排除非目标核酸干扰(如提取 mRNA 时去除 rRNA),满足下游高灵敏度检测(如数字 PCR、单细胞测序)需求。
七、常见问题(FAQ)

Q1:临床样本 DNA/RNA 提取中,常见的污染类型有哪些?如何有效避免?
A1:核心污染类型:
交叉污染:不同样本间的核酸污染(如样本 A 的 DNA 污染样本 B),常见于加样、离心时样本飞溅,或耗材(枪头、离心管)重复使用;
外源性核酸污染:环境中的核酸(如操作者皮肤脱落细胞 DNA、空气中的细菌 DNA)污染样本,导致下游 PCR 假阳性;
RNA 酶污染:环境中(如皮肤、唾液、耗材)的 RNA 酶降解 RNA 样本,导致 RNA 提取失败或完整性差;
化学污染:提取过程中残留的试剂(如酚、氯仿、盐类)污染核酸,影响下游实验(如酚抑制 Taq 酶活性,导致 PCR 失败)。
避免策略:① 分区操作:设置样本处理区、核酸纯化区、扩增区,避免交叉污染;使用生物安全柜处理样本,减少气溶胶污染;② 耗材与试剂控制:使用无核酸酶、无 RNA 酶的一次性耗材(枪头、离心管),试剂分装保存(避免反复使用导致污染);RNA 提取时全程加入 RNA 酶抑制剂;③ 操作规范:戴手套、口罩,定期更换手套(避免皮肤 RNA 酶 / DNA 污染);加样时避免枪头触碰样本管口,离心后缓慢开盖(防止样本飞溅);④ 清洁与质控:实验前后用核酸酶清除剂(如 RNase Zap)擦拭台面、仪器;设置空白对照(用无酶水替代样本,同步提取),若空白对照检出核酸,提示存在污染;⑤ 化学污染去除:增加洗涤次数(如离心柱法多洗 1 次),洗脱前晾干离心柱(去除残留洗涤液),确保无盐类、有机溶剂残留。
Q2:FFPE 组织(福尔马林固定石蜡包埋组织)提取 DNA/RNA 时,面临的主要挑战是什么?如何解决?
A2:核心挑战:
核酸交联与降解:福尔马林会导致 DNA/RNA 与蛋白质交联,且长期保存会导致核酸断裂(如 DNA 片段化、RNA 降解),影响提取后核酸的完整性;
石蜡与杂质残留:FFPE 组织中的石蜡难以彻底去除,残留石蜡会干扰裂解液与样本的接触,导致裂解不充分;同时组织中可能残留甲醛、重金属等杂质,抑制下游酶促反应;
提取效率低:交联与降解导致核酸释放量少,尤其是 RNA(FFPE 组织 RNA 降解更严重),提取浓度往往低于新鲜组织。
解决策略:① 脱蜡与交联逆转:使用二甲苯梯度脱蜡(如 60℃孵育 10 min,重复 2 次),彻底去除石蜡;加入交联逆转液(如 Tris-HCl 缓冲液含 EDTA),70-80℃孵育 1-2 h,打开核酸与蛋白质的交联;② 优化裂解条件:使用强裂解液(如含高浓度蛋白酶 K、SDS),56℃孵育 3-4 h(延长孵育时间),充分消化蛋白质,释放核酸;③ 核酸修复与纯化:使用核酸修复酶(如 DNA 聚合酶、RNA 连接酶)修复断裂的核酸链,提升完整性;采用磁珠法纯化(比离心柱法更易捕获片段化核酸),提高提取效率;④ RNA 提取特殊处理:RNA 提取时加入 RNA 酶抑制剂与抗氧化剂(如 β- 巯基乙醇),防止 RNA 进一步降解;使用针对 FFPE 组织的专用 RNA 提取试剂盒(如 Qiagen RNeasy FFPE Kit),其裂解液与纯化流程更适配 FFPE 样本;⑤ 质量检测调整:FFPE 组织 DNA/RNA 完整性低于新鲜组织,检测时需降低标准(如 DNA 片段大小 500-2000 bp 即可满足 PCR 需求,RNA RIN 值>5.0 可用于 RT-PCR)。
Q3:提取的 RNA 出现降解(电泳无 28S/18S 条带或 RIN 值<6.0),可能原因是什么?如何预防?
A3:降解原因:
外源性 RNA 酶污染:操作环境(台面、仪器)、耗材(枪头、离心管)、操作者(皮肤、唾液)中的 RNA 酶未清除,导致 RNA 提取过程中降解;
样本处理延迟:新鲜样本采集后未及时冷冻或加入 RNA 酶抑制剂,室温放置时间过长(如>2 h),内源性 RNA 酶(如细胞破裂释放的 RNA 酶)降解 RNA;
反复冻融:RNA 样本反复冻融(如>3 次),会导致核酸链断裂,完整性下降;
提取流程不当:裂解液加入不及时(样本未及时裂解,RNA 酶未失活)、洗涤不充分(残留 RNA 酶)、洗脱液含 RNA 酶(如无酶水被污染)。
预防策略:① 全程抑制 RNA 酶:使用无 RNA 酶的耗材与试剂,操作前用 RNA 酶清除剂擦拭台面、移液器;样本采集后立即加入含 RNA 酶抑制剂的裂解液(如 TRIzol),或快速冷冻(-80℃),避免内源性 RNA 酶激活;② 缩短样本处理时间:新鲜样本采集后 30 min 内完成裂解或冷冻,避免室温放置;解冻样本时在冰上操作,解冻后立即处理,不反复冻融;③ 优化提取流程:裂解液需足量(确保样本完全浸没),裂解后立即进行后续纯化步骤,避免长时间放置;洗涤时严格按试剂盒说明操作,确保去除残留 RNA 酶;洗脱液使用无 RNA 酶水,且提前验证无 RNA 酶污染;④ 质量检测与应急处理:提取后立即进行琼脂糖凝胶电泳或 RIN 值检测,发现降解及时分析原因;若样本珍贵,可尝试使用 RNA 降解修复试剂盒(如添加 RNA 稳定剂),或选择降解程度较低的区域重新提取(如组织样本选择未自溶的部分)。
Q4:提取的核酸浓度或纯度不满足下游实验需求(如浓度低、纯度差),该如何处理?
A4:浓度低的处理方案:
样本量不足:若原始样本量充足,可重新提取(增加样本用量,如从 0.5 mL 血液增至 1 mL);若样本量不足,使用微量提取试剂盒(如 Qiagen Micro Kit),或通过核酸富集技术(如磁珠富集、乙醇沉淀浓缩)提升浓度(如将 100 μL 洗脱液浓缩至 20 μL);
裂解不充分:重新优化裂解条件(如延长蛋白酶 K 孵育时间、提高裂解温度、增加裂解液用量),确保核酸充分释放;
洗脱效率低:使用预热的洗脱液(如 60℃无酶水),延长洗脱液与离心柱 / 磁珠的接触时间(如静置 5 min),或进行 2 次洗脱(合并洗脱液),提高核酸回收率。
纯度差的处理方案:
蛋白质污染(A260/A280<1.8):重新提取时增加蛋白酶 K 用量或延长孵育时间,彻底消化蛋白质;若已提取,可用酚 - 氯仿再次抽提(DNA 样本)或使用蛋白质去除柱(RNA 样本),去除残留蛋白质;
RNA 污染(DNA 样本 A260/A280>2.0):向 DNA 样本中加入 RNase A(终浓度 10 μg/mL),37℃孵育 30 min,然后重新纯化(如离心柱洗涤),去除 RNA;
盐类 / 有机溶剂污染(A260/A230<2.0):重新提取时增加洗涤次数(如离心柱多洗 1 次),确保彻底去除洗涤液;若已提取,可用无酶水稀释(降低盐浓度),或通过乙醇沉淀(加入 3 倍体积乙醇 + 0.1 倍体积醋酸钠,-20℃孵育 30 min,离心后用 75% 乙醇洗涤)纯化核酸;
杂质污染(如多糖、脂质):使用针对高杂质样本的专用试剂盒(如粪便 DNA 提取试剂盒含多糖去除柱),或在裂解时加入去垢剂(如 Triton X-100),去除脂质与多糖。
应急建议:若核酸样本珍贵且无法重新提取,可根据下游实验调整条件(如纯度略差但无酶抑制剂残留,可增加 PCR 反应体系中模板用量;浓度低可减少下游实验的模板体积需求,或使用高灵敏度检测方法)。

